Cómo limpiar correctamente las lentes del microscopio

La limpieza óptica es crítica: una lente sucia degrada resolución, contraste y puede rayar revestimientos. Protocolo seguro con productos accesibles:

Material

• Alcohol isopropílico 90-99% (o etanol 96%)
• Disolvente óptico específico (ej. Xilol / Xileno para grasa/pegamento, acetona solo en lentes sin tratamiento - ¡cuidado!)
• Papel de lente (lens tissue) - no papel higiénico, servilletas, algodón (rayan)
• Goteros / pipeta
• Guantes nitrilo (opcional)

Protocolo

1. Objetivos (lado muestra): Mezcla 1 gota amoníaco (o detergente neutro 0,1%) en ½ taza agua destilada. Humedece ligeramente papel lente. Limpia en espiral desde centro → bordes. No empapes. Si hay residuos pegajosos (aceite inmersión, montaje): usa xilol en papel lente (ventilación, guantes). Seca con papel lente seco.
2. Oculares: Sopla aire comprimido (polvo suelto). Aliento (condensación) + papel lente seco → arrastra suciedad ligera. Si persiste: papel lente con alcohol isopropílico (mínimo). No uses xilol/acetona en oculares (dañan armazón/gomas).
3. Ocular desmontable (si ves motas negras internas): Desenrosca ocular (si es roscado). Limpia lente interna con papel + alcohol. Revisa que no queden motas. Vuelve a enroscar.

Reglas de oro: Nunca soples directo con boca (saliva). Nunca uses ropa, papel higiénico, hisopos algodón. Siempre espiral centro→fuera. Limpia antes y después de cada sesión. Tapa objetivos/oculares al guardar.